尾静脉注射

尾静脉注射

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2023年2月23日发(作者：列锦修辞手法)

2019年2月

第41卷第1期

农垦医学

JournalofNongkenMedicine

Feb.2019

Vol.41No.1

小鼠是目前生物医学科学实验中最见的实验

动物之一，小鼠常被用于多种急性实验、慢性实验、

肿瘤实验以及其他药理和毒理学实验[1]。针对小鼠

的给药方式主要有尾静脉注射、腹腔注射、灌胃和

皮下注射等方式，其中尾静脉注射是一种非常重要

的给药方式[2,3]，但由于尾静脉的解剖学特点，造成其

注射成功率较低。基于此，本实验室总结出一种简

便、实用的小鼠尾静脉注射给药方法，同时介绍了

注射成功的验证方法。笔者对多年来小鼠尾静脉注

射的经验进行了总结和改进，希望通过该方法的介

绍，对广大科研工作者和医学类研究生的科研工作

有所帮助。

1材料与方法

1.1研究材料

成年昆明小鼠，1mL注射器，恒温水浴锅，50mL

离心管，台盼蓝（Trypanblue），脱脂棉球，75%酒精，

纱布，一次性乳胶手套。

1.2固定方法

本方法采用50mL离心管自制小鼠固定装置来

固定小鼠，具体方法如下：（1）将50mL离心管的底

部和盖子各钻出一个直径约为1cm的孔（如图

1A-C所示）；（2）把离心管口拧开，将小鼠头端朝向

离心管的底部缓慢送入离心管中；（3）把小鼠尾巴

从离心管盖子中间的孔中穿出，拧紧离心管盖子

（如图1D）；（4）固定好的小鼠头部和尾部如图2所

示，图2A所示小鼠头部朝向离心管底部开孔可以

正常呼吸，图2B所示小鼠尾巴从离心管盖孔中穿

出，方便后续尾静脉穿刺。

图1采用50mL离心管固定小鼠

图2固定好的小鼠头部和尾部图示

一种简单易行的小鼠尾静脉注射方法和验证方法

胡娜1邓诗瑜2许珍珍2冯子奕2王洋2

（1.石河子大学医学院医学教学实验中心，新疆石河子，832002；2.石河子大学医学院基础医学系，

新疆石河子，832002）

【摘要】小鼠是生物医学科研研究中最常用的实验动物之一，小鼠尾静脉注射是实验中最常用的注射方法。小

鼠尾静脉注射要求速度快且准确率高，由于小鼠尾静脉较细，新手穿刺成功率较低，本文着重介绍一种利用自制的

小鼠固定装置、恒温水浴锅对小鼠进行尾静脉注射，此方法为一种方便实用的小鼠尾静脉注射方法和注射成功的

验证方法。

【关键词】小鼠；尾静脉注射；台盼蓝；离心管；恒温水浴锅

中图分类号：R-332文献标识码：A

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第1期农垦医学第41卷

1.3注射手法

手持装有小鼠的自制离心管，将小鼠尾巴置入

45℃左右的水浴锅中浸泡1min左右。其目的为：第

一，温水浴可扩张小鼠尾静脉，方便后续进行的尾

静脉穿刺；第二，温水浴可软化小鼠尾部皮肤角质

层，方便后续进针时找到落空感。但仍注意水温不

宜过高，温度高于小鼠热痛阈可引起小鼠痛觉感

受，兴奋交感神经，根据不同的后续实验内容有可

能影响实验结果的稳定性和可靠性。

温水浸泡后将自制离心管置于自制手术台上

（可用木门门锁开孔器对木质手术台侧面进行开

孔，如图3）。将小鼠尾静脉朝上且正对操作者。用

75%酒精棉球消毒鼠尾；左手的食指和中指固定鼠

尾的近心端，目的是固定尾部阻断回心的尾静脉血

流以充盈尾静脉和防止小鼠躁动；左手的拇指和无

名指固定鼠尾的远心端，注意拇指稍向下翻以腾出

进针的平面（如图3）。

图3尾静脉握持和穿刺手法

1.4进针方法

右手握持1mL注射器，注意针头操作面和针筒

上的刻度均朝上，方便后续观察注射量。右手拇指在

上、中指和无名指在下稳定针筒，右手食指在针头尾

部以稳定针头（如图3所示）。进针位置可选择鼠尾

中下三分之一处为宜。进针时针头与被拉直的尾静

脉呈5～10度的夹角，切勿超过15度，否则易刺穿

尾静脉导致穿刺失败。待针头操作面大部分或刚好

全部进入小鼠尾部皮肤后，针头角度由原来的5～10

度迅速调整为0度向尾静脉近心端平推进针，可感

受到在静脉内明显落空感。同时，从皮肤下肉眼可见

针头向前推进（如图4）。若进针时存在阻力和推进时

阻力变化不明显，绝大部分可能是没有进入尾静脉

内。最后抽出针头用灭菌脱脂棉球按压止血。

图4针头进入尾静脉

1.5台盼蓝验证

将台盼蓝按1%浓度溶于生理盐水，注射时抽

取0.3mL的1%台盼蓝生理盐水溶液。如果针头进

入尾静脉内，推动针筒时可见原来比皮肤颜色略深

的尾静脉迅速变成深蓝色并沿静脉走形向内心端

流动。若针头没有进入静脉内部并推动针筒，可见

蓝色的台盼蓝溶液以针尖为中心向四周不规则弥

散，同时推动针筒的阻力增大。如果既有台盼蓝溶

液沿着静脉走形流向近心端也有向四周弥散的情

况，说明针头已把尾静脉刺穿，既有部分针头的操

作面在血管内部，还有部分在血管之外。

2结果

0.3mL的台盼蓝生理盐水溶液注射成功进入小

鼠血液循环系统中，数小时后小鼠的外观会发生明

显变化。主要表现为皮肤和黏膜呈现蓝色（如图5）。

图5中右上方小鼠是注射台盼蓝1天后的昆明小

鼠，未被毛发覆盖或者覆盖较少的皮肤和黏膜明显

呈现蓝色，眼结膜亦呈现蓝色。

图5注射1%台盼蓝生理盐水溶液后的小鼠与正常小鼠对比

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2019年2月

第41卷第1期

农垦医学

JournalofNongkenMedicine

Feb.2019

Vol.41No.1

3讨论

由于小鼠实验在各大医学高校科研及教学中

使用较多，故小鼠静脉注射的成功率是保证教学及

科研顺利进行的保障。本实验室通过反复试验，总

结出以下操作经验，其中固定鼠尾的手法尤为重

要。首先，食指和中指固定鼠尾根部以阻断静脉回

流保证尾静脉的充盈；其次，大拇指配合无名指固

定远心端鼠尾时需给注射器针头腾出足够的进针

空间，保证操作者以5～10度进针。

进针位置选择鼠尾中下三分之一至中点处为

宜，此处有两个优点。第一，尾静脉从鼠尾根部向尖

部方向走形时管径逐渐减小，尾尖部最细，不宜穿

刺，在中下三分之一处足够满足针头进行尾静脉穿

刺；第二，第一次穿刺失败后有充分的空间可以向

尾静脉的近心端移动进行二次穿刺；第三，根据成

年小鼠的尾部长度和成人手的大小，该位置更加适

合固定鼠尾和进针注射。

尾静脉注射适用于各种实验，掌握一种简单易

行的操作方法，可以提高操作的准确率，给实验的

进行节省很多时间。在部分研究中，尾静脉注射可用

于肺纤维化发病机制与观察抗纤维化药物疗效[4]；

采用尾静脉注射可更好地模拟白血病累计骨髓和

弥漫生长特点，以构建符合临床白血病病情特点的

模型[5]。有关动物实验的相关教材中，通常是使用有

机玻璃或者金属板等研制而成，加工不易，成本较

高[6]。本实验室总结用该方法进行尾静脉注射简单

易行，实用工具简单，无需购买特殊的小鼠固定装

置，且对于初学者更加容易上手操作且手法容易掌

握。故此方法可以指导新手快速入门和熟练操作，以

便其在教学和科研上取得较好效果，值得大力推广。

参考文献：

[1]顾为望,刘尹.医学实验动物学[J].中国实验动物学报,2008,(3):

219-220

[2]王玖恒,张园,谭乐诚,等.一种小鼠尾静脉注射的新方法[J].广西

中医药大学学报,2012,15(2):155-156

[3]余涛,曾阳,孙玉侠,等.一种小鼠尾静脉注射的操作方法[J].中国

比较医学杂志,2016，26(10):82-84

[4]KakugawaT,MukaeH,HishikswaY,zationofHSP47

mRNAinmurinebleomycin-inducedpulmonaryfibrosis[J].

VirchowsArchiv，2010，456(3):309-315

[5]张佳，文华，向东，等.尾静脉注射K562胞建立慢性髓系白

血病小鼠模型及其鉴定[J].中国实验血液学杂志，2012，20(3)：

773-776

[6]刘辉，康白.小鼠固定器的制作与应用[J].临床和实验医学杂志,

2010，3(3):227-228

[收稿日期：2018-12-05]

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