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干细胞培养

发布时间:2023-06-11 作者:admin 来源:文学

干细胞培养

干细胞培养

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2023年3月4日发(作者:画龙点睛的意思)

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[胚胎干细胞培养标准化操作规程]培养胚胎干

细胞

胚胎干细胞培养标准化操作规程6/28/01

目录

一、细胞

二、一般培养-保持胚胎干细胞处于未分化状态

培养基

细胞复苏

冻存细胞明胶包被

细胞传代

三、体外分化

培养基

包被有多聚鸟氨酸/纤维结合蛋白的培养板

体外分化方法

四、移植细胞的准备

细胞

多能性胚胎干细胞产生于小鼠胚泡

1、表达绿色荧光蛋白的B5-ES细胞。由Dr、Nagy的实验室

制备。

2、D3-ATCC;CRL-19

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34、我们得到时大约传了17代。

3、J1-由Dr、Jaenish的实验室友情提供。我们得到时大约

传了7-9代。

4、J1rtTA-rtTA表达J1细胞,由Dr、Jaenish的实验室友

情提供。

5、表达黄色荧光蛋白的YC5-ES细胞,由Dr、Nagy的实验

室提供。

一般培养--维持ES细胞处于未分化状态ES细胞培养用含有

ESGRO的高糖培养基来阻止细胞的分化。为细胞提供包被有%明胶

的平板作为粘附细胞的基质。建议每2-3天从达到80%-90%融

合的平板按1:8的比率传代细胞一次,细胞传代以后,在将细胞

接种在%明胶包被的培养皿之前,通过预先将细胞接种在没有经

过包被的组织培养板2个小时,使分化细胞粘附,从而将分化和

未分化细胞分开。将细胞全程置于37℃,5%CO2,100%湿度条件

下培养。

培养基

ES:

配制一20×不含DMEM,HS,ESGRO的溶液。分装在50ml

FALCON管中,,贮存在-20℃。通过将21ml该溶液,HS和ESGRO

加入450mlDMEM中制备培养基,μm滤膜过滤。贮存于4℃。

注:一瓶DMEM是500ml。

贮存液

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DMEM

马血清

L-谷氨酰胺

MEMNEAA

HEPES

β-巯基乙醇

PEST

ESGRO

复苏细胞

细胞被冻存在10%二甲基亚砜中防止结晶的形成,结晶的形

成会损害细胞。然而,二甲基亚砜对细胞有毒性,快速的进行细

胞复苏是很重要的。

步骤:

1、从液氮中取出一管细胞;

2、将冻存管置于37℃水浴中2分钟;

3、将细胞转移到一15mlFalcon管中;

4、加入5mlES培养基;

5、离心3分钟;

6、弃上清,用2mlES培养基重悬细胞,至少吹打10次;

7、接种在明胶包被的6孔或6cm组织培养皿;

8、孵育。

冻存细胞

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冻存液

90%HS和10%二甲基亚砜

步骤:

1、1×PBS洗细胞并留少许PBS在培养皿内;

2、用细胞刮刀收集细胞;

3、将细胞转入15mlFalcon管内并离心3分钟;

4、弃去上清并将细胞重悬于冷的冻存液中

5、分装于冻存管内,每管1ml;

6、置-80℃过夜,第二天移入液氮。

明胶包被

准备500ml%明胶溶液

1、将明胶溶解在500ml无钙镁的PBS中。

2、最好在溶液没有冷却的情况下通过μm滤膜过滤,贮存在

4℃。

包被培养板或培养皿

1、加入足量的明胶溶液覆盖培养平面;

2、置室温30分钟;

3、去除明胶溶液,将培养板贮存在包装袋中室温放置,最好

将板子平方,以免明胶污染盖子和流出培养板。

细胞传代

建议每2-3天传代细胞一次,过度生长的细胞会降低细胞的

自然分化率,我们建立了一种纯化方法来去除分化细胞,在将细

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胞接种在明胶包被的培养板上之前,通过将分化细胞黏附在没有

包被的组织培养板上去除分化细胞。纯化步骤包含在下面的方法

中。

1、去除培养液;

2、1×无钙镁PBS洗涤;

3、加入1×胰酶EDTA37℃孵育5分钟。

4、加入ES培养基使胰酶失活;

5、将细胞转入15ml离心管中离心3min;

6、去除上清,将细胞重悬于2mlES培养基,至少吹打10-20

次。

如果加入培养基的量较少会比较容易将细胞团弄散分开。ES

细胞有聚集成团的倾向,传代过程中仔细将细胞弄散分开很重

要。这样可能会减少细胞的自然分化。

7、将细胞接种在没有包被的组织培养皿中放入温箱2小时;

8、将含有细胞的培养基转入明胶包被的组织培养皿。吹打以

确保细胞被分散开

9、建议按1:4-1:10的比率传代

保持细胞的传代比率很重要,以我们的经验,1:8的比率是

好的,可以使细胞的自然分化降

到最低。当你使用不同规格的培养板进行细胞传代可以使用

表1来计算传代比率。

体外分化

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多能胚胎干细胞在体内外可以分化为各种类型的细胞。我们

的体外分化方法有利于神经前体细胞通过在最少量的培养基内选

择,在有bFGF存在的情况下扩增并最终分化在第5步。细胞全程

培养在37℃,5%CO2,100%湿度条件下。

时间线

第2步;4+1天

第3步;4-10天

第4步;4天

第5步;10-15天

培养基

EB

配制一20×不含DMEM,FBS,ESGRO的溶液。分装在50ml

FALCON管中,,贮存在-20℃。将21ml该溶液和50mlFBS加入

450mlDMEM中制备培养基,μm滤膜过滤。贮存于4℃。

注:一瓶DMEM是500ml。

贮存液

DMEM

胎牛血清

L-谷氨酰胺

MEMNEAA

HEPES

β-巯基乙醇

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PEST,μm滤膜过滤,贮存在-20℃。将该溶液加入DMEM/F12

中制备培养基,贮存于4℃。

贮存液

DMEM

转铁蛋白50mg/ml

胰岛素5mg/ml

亚硒酸钠300μM

黄体酮

腐胺

PEST

层粘连蛋白100μg/ml

纤维连接蛋白250μg/ml

碱性rhFGF,10μg/ml

*在第4步将bFGF加入N3培养基使终浓度为10ng/ml。

ITSFnandN3培养基贮存液的准备

使用无菌的溶剂和稀释液,在分装之前要对溶液进行过滤,

如果因为某些原因溶液在分装之前没有进行过滤,需要在管子上

标明以便别人在使用时知道该溶液不能直接用于细胞培养。

贮存液溶剂,贮存液,稀释剂和储存

转铁蛋白50mg/ml

胰岛素5mg/ml

亚硒酸钠300μM

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黄体酮

腐胺

PEST

层粘连蛋白

纤维连接蛋白

碱性rhFGF,

包被有多聚鸟氨酸/纤维结合蛋白的培养板

包被液的准备

多聚-L-鸟氨酸,15μg/ml

把75ml多聚-L-鸟氨酸和425ml1×PBS混合。贮存在4℃。

纤维结合蛋白,1μg/ml

把纤维结合蛋白和500ml1×PBS混合。

包被过程:

1、加入多聚-L-鸟氨酸,至少2-3小时

2、吸出多聚-L-鸟氨酸

3、加入纤维结合蛋白,大约1-2小时

4、吸出纤维结合蛋白,放置30分钟晾干

5、贮存在4℃

24孔板用200μl,6孔板用500μl。震荡培养板确保溶液能

够覆盖盖玻片或培养孔。有时需要剧烈震荡培养板。

体外分化方法

第1步:ES培养基

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在LIF存在的条件下维持细胞培养

第2步:EB培养基

使用细菌培养皿去除LIF后胚状体的形成需要4天。

1、分散纯化细胞

2、纯化2小时后将细胞转入含有ES培养基的50mlFalcon

管中,计数细胞取适量体积放入15ml管中离心3分钟。

3、用2mlEB培养基重悬细胞,吹打至少10次制成单细胞悬

4、一个15cm的细菌培养皿接种4~5×106个细胞。

5、2天后更换培养基

将胚状体转入锥形管中放置3~5分钟使细胞沉降。弃去上

清,将细胞重悬于新鲜培养基并接种在新的细菌培养皿中。

6、用EB培养基培养的第4天将细胞转入没有包被的组织培

养皿中。1个组织培养皿之中放置1个细菌培养皿,在进行第3步

之前一天将胚状体黏附在同样规格的培养板上。

形成胚状体需要4天时间。在EB培养基中再培养1天使胚状

体粘附在组织培养皿的表面。这一天被认为是第2步和第3步的

分界。

第3步--ITSFn培养基

在最少量培养基中选择神经前体细胞

1、在胚状体接种在组织培养皿一天后将培养基换成ITSFn培

养基

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2、并非所有胚状体在这一时期都已经发生粘附,因此在移除

培养基时要小心谨慎以使大部分胚状体留在培养皿内。

3、保持细胞在ITSFn中培养大约10天,根据需要更换培养

基--大约每隔一天。

观察细胞形态,神经样细胞大约出现在第4到第7天。当神

经样细胞能够被鉴别时,转入到第4步。步骤的转换应该在神经

前体细胞出现第一个清晰的标志几天以后,通常是在第3步的第6

到第10天。

第4步-N3培养基+bFGF

通过将神经前体细胞培养在含有10ng/mlbFGF的培养基中进

行扩增。

洗涤,加入2ml1×胰酶

2、37℃孵育5分钟

3、用4mlEB培养基终止胰酶活性,将细胞转入锥形管中放置

3~5分钟移出细胞团,将上清移入一新的离心管离心。

4、将细胞重悬于含有bFGF的N3培养基。

5、将细胞接种在包被多聚-L-鸟氨酸/纤维连接蛋白的盖玻片

上。24孔板接种×105/孔或6孔板×106/孔。

6、2天后更换培养基

第5步-N3培养基

通过撤除bFGF使神经前体细胞分化

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1、细胞被接种在盖玻片上4天后将培养基换成不含bFGF的

N3培养基

2、根据需要换液

3、分化10~15天后固定细胞

移除培养基

PBS洗涤

加入4%福尔马林

室温放置30分钟

PBS洗涤2次

储存于PBS。长期储存使用含%叠氮化纳的PBS

移植细胞的准备

细胞在胚状体形成4天以后被移植。正如在前文体外分化中

所描述的在移植之前4天开始形成胚状体。通常再需要一天时间

以便将胚状体移植入一10cm的培养皿。

移植

1、将胚状体转移至一15ml圆锥形管中放置3~5分钟使胚状

体沉降下来。

细胞被离心3分钟会更好。放置使之沉降将会去除更多的单

个细胞而这些细胞可以被离心下来。

2、去除上清将胚状体重悬于无钙镁离子的1×PBS中

3、离心3分钟

4、去除上清加入1×胰酶

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5、37℃水浴5分钟

6、加入5mlEB培养基小心吹打约10次

小心处理细胞很重要,进行细胞传代分散细胞时不可剧烈吹

打。

7、离心2分钟

8、吸出上清将细胞重悬于500μlEB培养基

9、用光滑的巴斯德吸管小心吹打5次

10、离心2次

11、吸出上清将细胞重悬于100μlEB培养基

烟酸己可碱标记ES细胞进行移植

1、准备一10μg/ml的烟酸已可碱染液

2、加入1mg到5mlEB培养基

3、将溶液稀释成10μg/ml

4、如前所述将细胞重悬于2ml烟酸已可碱染液而不是EB培

养基中制备ES细胞悬液,

5、将悬液置于室温30分钟

6、离心2分钟

7、吸出上清将细胞重悬于2mlEB培养基

8、重复一次

9、离心2分钟

10、吸出上清将细胞重悬于100μlEB培养基并置于冰上。

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