
华南农业大学农学院
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2023年2月12日发(作者:)立枯丝核菌不同融合群G蛋白β亚基基因克隆与分子进化分
析
舒灿伟;曹琦琦;赵美;江绍锋;周而勋
【摘要】为了揭示立枯丝核菌不同融合群菌株G蛋白β亚基基因的差异,利用同源
克隆的方法,克隆了立枯丝核菌8个融合群共13个菌株的G蛋白β亚基基因,并进
行分子进化分析.序列分析结果发现,不同融合群的立枯丝核菌的G蛋白β亚基基因
的内含子和开放阅读框数目一致,编码氨基酸均为347个.但氨基酸序列存在14个
位点的突变.同源性分析表明,立枯丝核菌各个融合群G蛋白β亚基基因之间的同源
性较高,同一亚群的菌株同源性达到100%,不同融合群之间存在差异.分子进化分析
表明,不同物种的G蛋白β亚基基因在进化上仍具有一定的保守性,不同融合群菌株
的G蛋白β亚基基因序列聚为一个分枝且与同属担子菌门的物种同源性最高.该研
究揭示了立枯丝核菌不同融合群G蛋白β亚基基因的特征,为该菌基因功能和分子
检测研究奠定了基础.%Tostudythegeneticdifferenceandmolecular
ngth
ofgDNAandcDNAsequencesofGproteinbeta-subunitgeneof13
strainsfrom8anastomosisgroups(AGs)ofRhizoctoniasolaniwere
edthat
thenumberofintronandopenreadingframeswereconsistentindifferent
isolates,whichencoded347aminoacidswith14pointmutations.
washigh,andthesimilaritypercentofisolatesfromthesameintraspecific
groupwas100%.Butthereweregeneticdiverseamongdif-ferentAGsin
logeneticanalysisindicatedthattheGproteinbeta-
subunitgenecouldeffectivelydistinguishdifferentAGs,anditalsocould
aledthe
characteristicofGproteinbeta-subunitgeneindifferentAGsfromR.
solani,andlaidthefoundationforthegenefunctionalanalysisand
moleculardetectionofthisfungus.
【期刊名称】《华北农学报》
【年(卷),期】2017(032)005
【总页数】6页(P7-12)
【关键词】立枯丝核菌;融合群;G蛋白;基因克隆;分子进化
【作者】舒灿伟;曹琦琦;赵美;江绍锋;周而勋
【作者单位】华南农业大学农学院,植物病理学系,广东省微生物信号与作物病害防
控重点实验室,广东广州510642;贵州省出入境检验检疫局,贵州贵阳550081;华
南农业大学农学院,植物病理学系,广东省微生物信号与作物病害防控重点实验室,
广东广州510642;华南农业大学农学院,植物病理学系,广东省微生物信号与作物
病害防控重点实验室,广东广州510642;华南农业大学农学院,植物病理学系,广东
省微生物信号与作物病害防控重点实验室,广东广州510642
【正文语种】中文
【中图分类】Q78
丝核菌(Rhizoctoniasolani)在自然界中广泛存在于土壤及各种不同类型的寄主植
物上,引起多种植物的严重病害[1]。但它们在致病性、形态学、培养性状及生理
特征等诸多方面均有所不同。目前国际上普遍采用Ogoshi的融合群标准菌株对立
枯丝核菌进行分类[2]。到目前为止,立枯丝核菌的融合群已有14个;同一个融
合群内的菌株由于相互之间融合频率不同,或具有独特特性(如特异的寄主范围、
营养要求或分子标记在遗传上的不同)而划分为融合亚群[3-4]。
近年来,随着分子生物学及相关技术方法的迅速发展,结合菌丝融合群与分子生物
学手段对丝核菌进行研究已是主要方向[5]。G蛋白β亚基编码的蛋白作为重要的
信号传导蛋白,对致病机理起着非常重要的作用[6]。目前,全世界已利用同源克
隆的方法成功地对30多个物种G蛋白β亚基基因进行了克隆,其中哺乳动物G
蛋白β亚基基因4个,植物G蛋白β亚基基因5个,真菌G蛋白β亚基基因20
个,其他类型G蛋白β亚基基因7个,并研究了这些基因的功能[7]。在真核生物
中,G蛋白β亚基基因参与信号传导途径,导致基因表达、细胞功能受到影响[5-
8]。在植物病原真菌中,G蛋白β亚基参与了病原菌的致病过程[9-12]。
Kasahara等[13]对板栗疫病菌(Cryphonectriaparasitica)的研究发现,丧失β亚
基基因功能导致菌丝缺乏明显分叉,对寄主植物的侵染和致病力明显降低,并影响
孢子的形成。但目前对水稻纹枯病菌(AG-1IA)G蛋白β亚基基因功能分
析的有关报道还比较少。
本研究利用同源克隆的方法,克隆立枯丝核菌8个融合群及其亚群菌株的G蛋白
β亚基基因,分析不同融合群之间以及与其他物种的G蛋白β亚基基因之间在分
子进化上的关系,为G蛋白β亚基基因在立枯丝核菌不同融合群中的功能分析和
分子检测奠定基础。
1.1供试菌株
供试菌株为立枯丝核菌8个融合群11个融合亚群的11个国际标准融合群菌株
(AG-1IA、AG-1IB、AG-1IC、AG-2-1、AG-2-2ⅢB、AG-4、AG-5、AG-6、
AG-8、AG-9和AG-BI)以及国内分离鉴定的属于AG-1IA的强致病力菌株GD-
118和C-30,共13个菌株。其中AG-1IA(GD-118)和AG-1IA(C-30)菌株由广
东省微生物信号与作物病害防控重点实验室保存,其余菌株由日本北海道大学
Ogoshi教授惠赠。
1.2主要试剂和仪器
真菌核酸提取试剂盒(货号9765、9108)、高保真酶、克隆载体pMD20-T、大肠
杆菌JM109、反转录试剂盒等均购自TaKaRa公司;引物合成和测序由奥科生物
公司完成。PCR扩增仪veriti96-wellThermalcycle9902购自美国Torrey
PinesScientific公司;凝胶成像系统AlphaImagerEP购自美国Alpha
Innotech公司。
1.3菌株纯化及菌丝收集
将保存于斜面上的菌种移到水琼脂平板活化后,在PDA上生长2d。用内径5
mm的打孔器在菌落边沿打取菌饼,将5块菌饼接入到100mLPDB培养基中,
在28℃下振荡培养3~4d。菌丝体用无菌滤纸过滤后,用ddH2O洗涤2~3次,
吸干水分后马上用液氮冷冻,放入-80℃冰箱中保存备用。
1.4核酸提取和PCR扩增
核酸提取的具体步骤详见产品说明书。以DNA为模板,用高保真酶进行PCR扩
增,所用引物序列为:F:5′-TGGCTTGTTGGGTTGA-3′;R:5′-
TGACCACGACCAAATGAA-3′。扩增程序为:95℃预变性2min;94℃变性30
s,退火温度下复性40s,72℃延伸1min(35个循环);72℃延伸10min;4℃
保存。同样以RNA为模板,用一步法反转录试剂盒进行RT-PCR扩增,所用引物
序列为:F:5′-ATG
TCGAACCAAGGAGATATT-3′;R:5′-TTACGCCCAGA
CCTTGAG-3′。扩增程序为:50℃30min;94℃2min;94℃30s,退火温
度下30s,72℃1min(30个循环);72℃延伸10min;4℃保存。分别将PCR
与RT-PCR的产物切胶回收,连接到克隆载体pMD20-T,再转化到大肠杆菌
(Escherichiacoli)JM109感受态细胞。通过蓝白斑筛选和PCR验证,将阳性克隆
子送往奥科公司测序。
1.5序列分析
1.5.1分子进化分析利用DNAStar软件分析13个菌株G蛋白β亚基基因DNA
序列的相似度,并利用MEGA7软件和iIOL网站(http:///)构建13
个菌株以及与其他植物病原真菌G蛋白β亚基基因的分子进化树。
1.5.2开放阅读框和内含子分析用DNAMAN软件将13个菌株的gDNA序列和
cDNA序列进行比对,分析内含子的位置并进行氨基酸比对。用DNAStar软件查
找13个菌株G蛋白β亚基基因cDNA全长序列的开放阅读框(Openreading
frame,ORF)。
2.1核酸的提取结果
立枯丝核菌13个菌株的DNA(图1-A)和RNA(图1-B)电泳结果表明,所提取的核
酸条带完整,没有降解现象,电泳背景干净,没有杂质残留。通过微量紫外分光光
度检测,所有样品的浓度和纯度都能满足后续的研究。
2.2PCR扩增结果
PCR的扩增产物电泳结果表明,AG-1IA、AG-1IB、AG-1IC、AG-2-1、AG-2-
2ⅢB、AG-4、AG-6、AG-8、AG-9、AG-BI融合群标准菌株和GD-118、C-30
这12个菌株扩增条带大约为1800bp,而融合群AG-5标准菌株扩增条带大约
为1500bp(图2-A);RT-PCR的扩增产物电泳结果表明,13个菌株均扩增出大
约1000bp的目的条带(图2-B)。
2.3序列比对结果分析
将PCR和RT-PCR扩增产物进行克隆测序,序列分析结果表明,13个菌株G蛋
白β亚基基因序列的总体相似性为88.93%,具有较高的同源性;其中AG-1IA
亚群的标准菌株与从我国分离到的同一个融合亚群的菌株AG-1IA(GD-118)和
AG-1IA(C-30)(均分离自水稻)的相似度达到100%。融合群/亚群AG-1IA、AG-
1IB、AG-1IA(GD-118)、AG-1IA(C-30)、AG-2-1、AG-2-2ⅢB、AG-6、AG-
8和AG-9的序列相似性达到99.55%,也表现出了很高的同源性。融合群AG-6、
AG-8、AG-9的G蛋白β亚基基因序列的相似性达到99.74%,也具有很高的同
源性。融合群AG-4和AG-5、AG-4和AG-6、AG-5和AG-6的相似性分别为
69.48%,70.63%和64.85%,同源性较低。桥梁菌株AG-BI与AG-1IA、AG-4、
AG-5、AG-6和AG-1IC的序列相似性分别81.75%,70.15%,64.44%,81.34%
和79.58%。
2.4分子进化分析
本研究采用MEGA7软件和iTOL网站分析了立枯丝核菌不同融合群菌株的G蛋
白β亚基基因与其他真菌G蛋白β亚基基因的亲缘关系。结果表明(图3),立枯丝
核菌的13个菌株与同属于担子菌门(Basidiomycota)的玉米黑粉菌(Ustilago
maydis)聚在一个大的分枝,其分子进化关系较其他真菌门的菌较近,并且同属一
门不同属之间真菌之间表现出较近的亲缘关系,因而可知不同物种之间G蛋白β
亚基基因在进化上具有保守性。从图3还可看出,AG-BI、AG-1IC、AG-4、AG-
5这4个融合群/亚群菌株的亲缘关系较远。AG-6、AG-8、AG-9这3个融合群
可聚在一个分支,AG-1IA、AG-1IB、AG-2-1、AG-2-2ⅢB、AG-1IA(GD-
118)、AG-1IA(C-30)可分布成一支,因此它们的分子进化关系较近。
2.5G蛋白β亚基基因全长序列和内含子分析
用DNAStar软件查找开放阅读框(ORF),得到一个完整的ORF,说明此序列是一
个G蛋白β亚基基因的全长序列。用DNAMAN软件分析13个菌株G蛋白β亚
基基因的gDNA序列和cDNA序列,发现G蛋白β亚基基因均存在4个内含子。
2.6氨基酸序列分析比对
把8个融合群13个菌株的G蛋白β亚基基因的cDNA全长序列翻译成氨基酸序
列再用DNAMAN软件进行比对,发现该基因编码347个氨基酸,比对结果表明,
存在14个氨基酸的差异,其中第27,37,83,182,222,225,233,264,
270,272,320,329位氨基酸存在1个位点的差异,而第31和35位存在2个
氨基酸位点差异(图4)。同属一个融合亚群的序列没有发生突变,序列保守性比较
强;而发生氨基酸位点差异主要是AG-4、AG-5和AG-BI这3个融合亚群。
G蛋白是细胞内一类重要的信号传导蛋白,在高等动物、简单真核生物、昆虫及植
物中普遍存在[14]。目前的研究表明,G蛋白的转膜信号的中介作用,并且对该系
统各组分的不断研究已成为生物化学和分子生物学领域的研究热点[6,13,15]。
G蛋白β亚基编码的蛋白作为重要的信号传导蛋白,在致病机理方面起着非常重
要的作用[13,16-18]。
关于植物病原真菌G蛋白β亚基基因的克隆与功能已有较多报道,这些研究发现,
真菌G蛋白β亚基主要是在病菌交配过程中起作用,也发现G蛋白β亚基功能缺
失后的菌株毒性丧失[19]。Nishimura等[20]研究发现,稻瘟菌(Magnaporthe
grisea)G蛋白β亚基基因MGB1缺失突变体会表现出产孢量下降,致病力减弱。
在尖孢镰刀菌(Fusariumoxysporum)和玉米赤霉(Gibberellazeae)中,G蛋白
β亚基基因可影响真菌毒素产生和致病力[21]。Delgado-Jarana等[22]发现,尖
孢镰刀菌(Fusariumoxysporum)的G蛋白β亚基通过参与cAMP或独立于
cAMP的代谢途径控制病菌的生长、发育和致病过程。
本研究比较了立枯丝核菌8个融合群13个菌株的G蛋白β亚基基因序列,发现
它们之间相似度较高,但有些融合群的G蛋白β亚基基因之间存在一些差异。不
同融合群菌株的G蛋白β亚基基因的同源性的高低与是否为同一融合群并没有太
大的联系。融合群是根据菌丝融合测定的方法来划分的,是在生物学水平上的分类,
并不能代表其在分子水平的差异。但同一亚群菌株的G蛋白β亚基基因同源性达
到100%,说明同一融合亚群菌株之间的G蛋白β亚基基因没有出现遗传分化[2-
3]。为进一步直观揭示这些差异,本研究构建了立枯丝核菌G蛋白β亚基基因序
列的分子进化树,发现了AG-1IA、AG-1IB、AG-1IA(GD-118)、AG-1IA(C-
30)、AG-2-1、AG-2-2ⅢB为一支,进化关系比较近。AG-6、AG-8和AG-9为
一支,其进化关系最近。而AG-1IC、AG-4、AG-5和AG-BI聚为一支,亲缘关
系较远。比较立枯丝核菌不同融合群菌株与其他近缘真菌G蛋白β亚基基因的相
似性及亲缘关系的远近,结果发现立枯丝核菌和玉米黑粉菌同属于担子菌门,表现
出的亲缘关系较其他真菌门的真菌较近,并且同门真菌的属之间也表现出较近的亲
缘关系,因而可知不同物种之间G蛋白β亚基基因在进化上具有保守性,这可能
提示其功能的保守性。本研究找出了立枯丝核菌G蛋白β亚基基因的4个内含子,
对立枯丝核菌不同融合群G蛋白β亚基基因的相关功能表达研究具有指导意义。
同时,本研究比较了立枯丝核菌不同融合群G蛋白β亚基基因翻译蛋白(氨基酸)
全长序列的差异,对研究立枯丝核菌不同融合群G蛋白β亚基基因的分化和分子
检测具有重要意义。
【相关文献】
[1]马亚男.立枯丝核菌内切纤维素酶诱导寄主的防卫反应[D].泰安:山东农业大学,2016.
[2]yandpathogenicityofanastomosisandintraspecificgroupsof
RhizoctoniasolaniKuhn[J].AnnualReviewofPhytopathology,1987,25(1):125-143.
[3]CarlingDE,KuninagaS,anastomosisreactions,rDNA-internal
transcribedspacersequences,andvirulencelevelsamongsubsetsofRhizoctoniasolani
anastomosisgroup-2(AG-2)andAG-BI[J].Phytopathology,2002,92(1):43-50.
[4]肖勇.Ⅰ四川水稻立枯丝核菌的遗传分化与致病力研究;Ⅱ水稻立枯丝核菌G蛋白β亚基基因
的克隆、表达与序列分析[D].雅安:四川农业大学,2008.
[5]UtsunomiyaY,SamejimaC,TakayanagiY,ssionoftherice
heterotrimericGproteinβ-subunitgene,RGB1,causesdwarfismandbrowningof
internodesandlaminajointregions[J].ThePlantJournal:forCellandMolecularBiology,
2011,67(5):907-916.
[6]SathyanesanA,FeijooAA,MehtaST,sionprofileofG-proteinβγ
subunitgenetranscriptsinthemouseolfactorysensoryepithelia[J].FrontiersinCellular
Neuroscience,2013,7:84.
[7]MaYN,ChenM,XuDB,etal.G-proteinbetasubunitAGB1positivelyregulatessalt
stresstoleranceinArabidopsis[J].JournalofIntegrativeAgriculture,2015,14(2):314-
325.
[8]SubramaniamG,TrusovY,Lopez-EncinaC,eterotrimericGproteinγ-
subunitregulatesauxinandABAsignalingintomato[J].PlantPhysiology,2016,170(2):
1117-1134.
[9]SongN,DaiQ,ZhuB,etal.GαproteinsGvm2andGvm3regulatevegetative
growth,asexualdevelopment,andpathogenicityonappleinValsaMali[J].PLoSOne,
2017,12(3):e0173141.
[10]GuoLJ,YangLY,LiangCC,-proteinsubunitsFGA2andFGB1play
distinctrolesindevelopmentandpathogenicityinthebananafungalpathogenFusarium
nse[J].PhysiologicalandMolecularPlantPathology,2016,93:29-
38.
[11]CaiZD,ChaiYF,ZhangCY,β-likeproteinCpcBisrequiredforhyphal
growth,conidiophoremorphologyandpathogenicityinAspergillusfumigatus[J].Fungal
GeneticsandBiology,2015,81:120-131.
[12]QiZ,LiuM,DongY,taxinprotein(MoSyn8)mediatesintracellular
traffickingtoregulateconidiogenesisandpathogenicityofriceblastfungus[J].TheNew
Phytologist,2016,209(4):1655-1667.
[13]KasaharaS,eddisruptionofafungalG-proteinbetasubunitgene
resultsinincreasedvegetativegrowthbutreducedvirulence[J].MolecularPlant-microbe
Interactions,1997,10(8):984-993.
[14]李利,陈莎,毛涛,等.丝状真菌G蛋白信号途径的研究进展[J].微生物学通报,2013,
40(8):1493-1507.
[15]MaH,YanofskyMF,larcloningandcharacterizationof
GPA1,aGproteinalphasubunitgenefromArabidopsisthaliana[J].Proceedingsofthe
NationalAcademyofSciencesoftheUnitedStatesofAmerica,1990,87(10):3821-
3825.
[16]IdnurmA,enicitygenesofphytopathogenicfungi[J].Molecular
PlantPathology,2001,2(4):241-255.
[17]Ferrero-Serranoá,α-subunitofthericeheterotrimericGprotein,
RGA1,regulatesdroughttoleranceduringthevegetativephaseinthedwarfricemutant
d1[J].JournalofExperimentalBotany,2016,67(11):3433-3443.
[18]YamagishiD,OtaniH,insignalingmediatesdevelopmental
processesandpathogenesisofAlternariaalternata[J].MolecularPlant-microbe
Interactions,2006,19(11):1280-1288.
[19]WangP,PerfectJR,-proteinbetasubunitGPB1isrequiredfor
matingandhaploidfruitinginCryptococcusneoformans[J].MolecularandCellular
Biology,2000,20(1):352-362.
[20]NishimuraM,ParkG,-betasubunitMGB1isinvolvedinregulating
multiplestepsofinfection-relatedmorphogenesisinMagnaporthegrisea[J].Molecular
Microbiology,2003,50(1):231-243.
[21]YuHY,SeoJA,KimJE,onalanalysesofheterotrimericGproteinG
alphaandGbetasubunitsinGibberellazeae[J].Microbiology,2008,154(2):392-401.
[22]Delgado-JaranaJ,Martínez-RochaAL,Roldán-RodriguezR,um
oxysporumG-proteinbetasubunitFgb1regulateshyphalgrowth,development,and
virulencethroughmultiplesignallingpathways[J].FungalGeneticsandBiology,2005,
42(1):61-72.